实验动物讲义课件.ppt
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- 实验 动物 讲义 课件
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1、实验实验1 1 基本技能操作基本技能操作一一 实验动物的抓取固定方法实验动物的抓取固定方法1小鼠的抓取固定方法小鼠的抓取固定方法抓取:不要激惹,可单手、双手抓取:不要激惹,可单手、双手固定:鼠板(蜡板)和固定器两种固定:鼠板(蜡板)和固定器两种2 大鼠的抓取固定方法大鼠的抓取固定方法抓取抓取:戴防护手套:帆布或硬皮质的(否则狂犬:戴防护手套:帆布或硬皮质的(否则狂犬疫苗)疫苗)方法一同小鼠方法一同小鼠方法二方法二:腋下,拇指抵下颌骨,掌心握身体中段腋下,拇指抵下颌骨,掌心握身体中段固定固定同小鼠同小鼠3 豚鼠的抓取固定方法豚鼠的抓取固定方法 豚鼠性情温和,胆小易惊,一般不易伤人。豚鼠性情温和,
2、胆小易惊,一般不易伤人。1拇指和食指环扣其颈部,另一手托臀部;拇指和食指环扣其颈部,另一手托臀部;2另外可用布袋固定。另外可用布袋固定。4 兔的抓取固定方法兔的抓取固定方法抓取抓取:右手从头前部把两耳压于手掌内,将颈部的毛连:右手从头前部把两耳压于手掌内,将颈部的毛连同皮一起提起;左手托住臀部。同皮一起提起;左手托住臀部。注意:不可只抓两耳,会损伤的。注意:不可只抓两耳,会损伤的。固定:固定:常用两种常用两种盒式固定:常用于兔脑内和耳血管的操作;盒式固定:常用于兔脑内和耳血管的操作;台式固定:常用于测量血压、呼吸、静脉采血;一般麻台式固定:常用于测量血压、呼吸、静脉采血;一般麻醉后用。醉后用。
3、5 狗狗 将其嘴用绳捆绑后绕至颈后固定系好将其嘴用绳捆绑后绕至颈后固定系好二二 实验动物编号标记方法实验动物编号标记方法 为了观察每个动物的不同情况,必须进行编号标记。为了观察每个动物的不同情况,必须进行编号标记。应保证作到号码清楚、耐久、简便、易认和适用。应保证作到号码清楚、耐久、简便、易认和适用。1颜料涂染颜料涂染 即用化学剂在动物身体明显部位如被毛、四肢等处进即用化学剂在动物身体明显部位如被毛、四肢等处进行涂染或用不同颜色等来区分各组动物,是实验室最行涂染或用不同颜色等来区分各组动物,是实验室最常用、最容易掌握的方法。常用、最容易掌握的方法。常用的编号标记液有常用的编号标记液有:3%-5
4、%苦味酸溶液苦味酸溶液 涂染黄色涂染黄色2%硝酸银溶液硝酸银溶液 咖啡色(涂后需光照咖啡色(涂后需光照10分钟)分钟)0.5%中性红或品红溶液中性红或品红溶液 红色红色煤焦油酒精溶液煤焦油酒精溶液 黑色黑色龙胆紫溶液龙胆紫溶液 紫色紫色2烙印法:不常用烙印法:不常用3号牌法:不常用号牌法:不常用如狗可用挂牌或背部剪毛或烫毛的方法;如狗可用挂牌或背部剪毛或烫毛的方法;家兔与豚鼠可用号码烙印钳在背部编号;家兔与豚鼠可用号码烙印钳在背部编号;大小鼠常用大小鼠常用3%-5%苦味酸编号,不同部位苦味酸编号,不同部位代表不同数字。代表不同数字。三三 实验动物给药途径和方法实验动物给药途径和方法1皮内注射:
5、脱毛后进行小泡不会很快消失。如青霉素皮内注射:脱毛后进行小泡不会很快消失。如青霉素皮试。皮试。兔、豚鼠和大鼠的注射部位均为背部脊柱两侧的皮兔、豚鼠和大鼠的注射部位均为背部脊柱两侧的皮肤。注射时针头的孔朝上与皮肤平行刺入皮内(表皮和真皮肤。注射时针头的孔朝上与皮肤平行刺入皮内(表皮和真皮间),如果小泡不很快消失则证明在皮内。间),如果小泡不很快消失则证明在皮内。注射量:小鼠最多不超过注射量:小鼠最多不超过0.05ml,豚鼠、大鼠和兔,豚鼠、大鼠和兔一般为一般为0.1ml。2皮下注射:皮下注射:注射针头进入皮下(真皮下),若针注射针头进入皮下(真皮下),若针头能自由拨动无牵阻,注入注射液后形成小泡
6、,很快消失。头能自由拨动无牵阻,注入注射液后形成小泡,很快消失。或通过后腿肌肉进入皮下注射。或通过后腿肌肉进入皮下注射。3肌肉注射:大小鼠直接刺入大腿外侧肌肉内,回肌肉注射:大小鼠直接刺入大腿外侧肌肉内,回血无则可推液。兔在臀部。血无则可推液。兔在臀部。4腹腔注射:进针方向与腹股沟垂直,无回血回尿腹腔注射:进针方向与腹股沟垂直,无回血回尿即可推液。小鼠头低尾高位。小鼠一般为即可推液。小鼠头低尾高位。小鼠一般为0.51ml,豚鼠、豚鼠、兔一般为兔一般为5ml。5静脉注射:静脉注射:*大鼠小鼠尾静脉注射大鼠小鼠尾静脉注射0.5ml为宜;左右为为宜;左右为静脉,上下为动脉;于下静脉,上下为动脉;于下
7、1/3处注射,先处注射,先用用45度温水或酒精处理,使血管充盈。度温水或酒精处理,使血管充盈。*兔耳缘静脉注射;兔耳缘静脉注射;6经口给药:经口给药:*大小鼠:大鼠大小鼠:大鼠1-2ml/次,小鼠次,小鼠0.1-0.3ml/10g体重体重/次次 左手持鼠,腹部朝上,头部向上有一个倾斜度;右手持灌胃左手持鼠,腹部朝上,头部向上有一个倾斜度;右手持灌胃器,从口角进针,随其吞咽通过食道进入胃内。如果不挣扎,有落器,从口角进针,随其吞咽通过食道进入胃内。如果不挣扎,有落空感,说明在胃内;如果挣扎或呕吐,有阻力,不可硬插,进入气空感,说明在胃内;如果挣扎或呕吐,有阻力,不可硬插,进入气管会造成死亡,应重
8、来。管会造成死亡,应重来。灌胃器的制作方法:灌胃器的制作方法:用腰穿的针头,前部略弯,或用腰穿的针头,前部略弯,或12号注射针头,头部磨钝或焊号注射针头,头部磨钝或焊成凸沿,针头部大小鼠约长成凸沿,针头部大小鼠约长57cm。兔:兔:用木制张口器放入口内,动物即咬住张口器用木制张口器放入口内,动物即咬住张口器。从小孔中插入。从小孔中插入15cm长的导尿管,轻、慢地送入食长的导尿管,轻、慢地送入食管及胃内。用动物毛在导管口试一下,随呼吸不摆管及胃内。用动物毛在导管口试一下,随呼吸不摆动,不挣扎,即可连接注射器,灌液。动,不挣扎,即可连接注射器,灌液。7其他给药途径其他给药途径呼吸道给药:磨口瓶,插
9、入两根管,如毒气、粉呼吸道给药:磨口瓶,插入两根管,如毒气、粉尘、烟雾等尘、烟雾等皮肤给药:背部脱毛后涂药,用兔、豚鼠皮肤给药:背部脱毛后涂药,用兔、豚鼠脊髓腔内给药:兔伏卧位,脊髓腔内给药:兔伏卧位,L7间隙下进针间隙下进针小脑延髓给药:小脑延髓给药:C1上进针,可用大动物上进针,可用大动物脑内给药:微生物室常用脑内给药:微生物室常用直肠内给药:导尿管插入兔肛门直肠内给药:导尿管插入兔肛门关节腔内给药:注入关节腔内给药:注入实验动物用药量的确定及计算方法实验动物用药量的确定及计算方法大量实验证明,生物活性物质或药物在动物体内细胞外液中大量实验证明,生物活性物质或药物在动物体内细胞外液中的浓度
10、和作用与体表面积呈平行关系。因此,人与动物之间的浓度和作用与体表面积呈平行关系。因此,人与动物之间进行剂量换算,应当按体表面积比值进行换算。进行剂量换算,应当按体表面积比值进行换算。(一)动物给药量的确定(一)动物给药量的确定1先用少量小鼠探索一下中毒剂量或致死量,然后取中毒剂量先用少量小鼠探索一下中毒剂量或致死量,然后取中毒剂量或致死量的或致死量的1/101/15,通过预实验再在动物身上探索;若,通过预实验再在动物身上探索;若用大动物如猫、狗等,需在鼠类用量的用大动物如猫、狗等,需在鼠类用量的1/151/2范围内探索范围内探索。2人与动物用药量的折算:人与动物用药量的折算:人类用药量为人类用
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