微生物第七章1课件.pptx
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- 微生物 第七 课件
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1、1第七章 微生物的生长及其控制第一节 微生物生长规律第二节 影响微生物生长的环境因素第三节 微生物生长的控制方法2第一节 微生物的生长规律7.1.1 微生物的培养和群体生长7.1.2 生物量测定方法7.1.3 微生物的生长规律7.1.4 生长参数和生长过程控制7.1.5 维持稳定生长的方法3l微生物的培养:在实验室或在工业上,使用培养基和培养容器,在特定培养工艺和培养条件下,人工培养微生物,获得微生物菌体或代谢产物的过程;l在培养过程中,微生物的个体生长表现为细胞组分的均衡增加,细胞形态略有增大;l微生物的繁殖导致个体数量或生物量有规律的增长,表现为群体的生长;群体生长与培养条件(培养基和环境
2、因素)密切相关;7.1.1 微生物培养和群体生长4l在人工培养条件下培养微生物,通过繁殖而得到的微生物群体称为培养物(culture);l只有一种微生物的培养物,或者由单个细胞繁殖得到的微生物群体,称为纯培养物(pure culture),简称纯培养;l微生物的实验室培养和工业发酵,一般都是纯培养;l微生物由于个体微小,很容易混杂,需要经常性的进行菌种纯化,以获得微生物的纯培养;微生物的纯培养5l平板单菌落分离法:使微生物的单细胞或单孢子充分分散,彼此分开,然后涂布在固体平面培养基上,培养后长出的单菌落,很可能是由一个细胞或孢子繁殖形成的纯培养;平板划线法分离法稀释涂(倒)平板法l显微操纵器分
3、离:借助显微镜和显微操作工具,直接分离单细胞(单孢子),然后接种培养;纯培养的分离方法6l用接种环取一环菌悬液或菌苔,在平板上划线;l每画一组平行线,灼烧接种环一次;反复划线、可拉出单细胞;平板划线法分离法7 稀释涂(倒)平板法l将待分离材料制备成悬液,使细胞或孢子充分分散;用10倍稀释法稀释,取适当浓度的稀释液,涂布平板或与培养基混合后倒平板:涂平板加菌悬液0.2mL倒平板加菌悬液1mL8微生物的培养方法l根据培养基物理状态和培养规模,好氧微生物培养方式分为:固体斜面培养、固体平板培养、茄子瓶培养、大规模固体发酵;半固体试管培养;摇管培养、摇瓶培养、小型发酵罐培养、大规模深层搅拌液体发酵;l
4、实验室培养厌氧菌需要驱除和隔绝氧气;工业厌氧液体发酵;9l在微生物生理代谢基础研究,或者微生物工程应用中,大多使用发酵罐(生物反应器)进行液体培养;分批培养(batch culture):指恒定体积的液体培养,从接种开始,直到培养结束,在培养过程中不补充营养,也不移出培养物;流加分批培养:在培养过程中,不断流加营养物,培养体积不断增加;连续培养:在培养过程中,不断流加营养物,同时不断移出培养物;发酵罐微生物液体培养方式10微生物工业发酵过程l发酵工程包含三个过程:上游技术(微生物遗传育种技术)、微生物发酵过程和下游技术(分离工程);l微生物发酵过程包含同时进行的微生物培养过程和微生物反应过程;
5、l在工业微生物发酵过程中,既要控制微生物的生长,又要控制微生物的代谢;通常的微生物培养仅需要控制微生物的生长;l控制微生物生长,必需了解微生物的生长规律,清楚影响生长的主要因素;11青霉素G的发酵生产工艺发酵(反应)过程l种子培养:产生健壮和大量的种子;产黄青霉接种到固体培养基上,在25下培养7天,收获产黄青霉的孢子;将孢子洗脱下来,制备孢子悬液,接种到液体种子培养基中,在27下,种子罐通气搅拌培养24h;l发酵培养(微生物反应):获得大量次级代谢产物;将种子培养液接种到发酵罐中,在27下,通气搅拌培养7天,期间流加苯乙酸,作为合成青霉素的前体物;12种子扩大培养和发酵的工艺流程和工艺条件l工
6、业发酵:通过控制微生物的培养条件,使微生物正常生长,并大量积累目标代谢产物;平面培养一级种子罐培养摇管培养摇瓶培养二级种子罐培养发酵培养137.1.2 生物量测定方法l微生物培养物的定量测定,称为生物量测定;测定对象不同,方法不同,单位也不同,但可互相校正;显微镜直接计数法:测单细胞或单孢子;平板菌落计数法:测单细胞或单孢子;细胞湿重和干重法:测定单细胞或丝状微生物;分光光度法:测单细胞或单孢子;生理指标法:测定单细胞或丝状微生物;14显微镜直接计数法l显微镜直接计数法:是在显微镜下,用血球计数板对单细胞或单孢子直接计数,单位为:个数/mL;l显微镜直接计数法不能区分死菌与活菌,称为全菌计数法
7、;15l血球计数板是一块特殊的载波片,在中间的两个平台上各刻有一个大方格网;大方格网由九个大方格组成,中间的正方形大方格为计数室;l计数室边长1mm、高0.1mm,体积0.1mm3(10-4 ml)血球计数板的结构计数室平台方格网方格网16l计数室被划分为25个中方格,每个中方格分为16个小方格,共400个小方格;上面盖上盖玻片;血球计数板的使用方法l浓度约108个细胞/毫升的菌悬液,滴加在盖玻片与血球计数板平台的结合处,使菌悬液经毛细作用吸入计数室,静置,使细胞沉底;l计数若干小格内的细胞数,计算每小格平均数,则:菌浓(个/ml)每格平均数400104稀释倍数17l将待测菌悬液适当稀释后,涂
8、布在平面培养基上,培养后进行菌落计数,一个菌落相当于一个活细胞;l平板菌落计数属于活菌计数法,适用于单细胞或单孢子计数,单位:菌落形成单位/mL(cfu/mL)(colony forming unit,cfu)平板菌落计数法l选择生长50300个单菌落的平板进行计数,结果准确;18平板菌落计数方法l10倍稀释法制备待测菌悬液,选择适当的稀释度,定量(0.10.2mL)取稀释液涂布平板,或者定量(1mL)取稀释液与融化后冷却至45的培养基混合倒平板;l培养后,对长出的单菌落计数,根据稀释倍数,得到原菌液的生物量:cfu/mL通常选择三个稀释度涂平板,择其合适者计数;19l单细胞或丝状微生物的生物
9、量均可用直接测量湿重或干重的方法测量;离心收集细胞沉淀,无菌水充分洗涤后,直接分析天平称重湿重(mg/ml);洗涤后的细胞沉淀在105下烘干至恒重,分析天平称重干重(mg/ml);l培养液菌体湿重约40g/L,干重约4mg/mL;l湿重受培养基成分影响大,而不准确;干重法费时,灵敏度低,适于测定丝状微生物:细胞湿重和干重法20l在一定范围内,菌悬液的菌体浓度与一定波长下的光密度值(optical density,OD值)呈线性关系;用分光光度计,在600nm波长下,测定菌悬液的OD600值,或吸光度值(A600),可校正为1 OD=n个细胞/mL;分光光度法lOD值在0.20.8之间呈线性关系
10、;l适用于单细胞或单孢子悬液的生物量测定;21l在不方便使用显微计数、平板菌落计数、细胞湿重和干重测定、分光光度测定生物量的情况下,可测定与生物量成比例关系的细胞总蛋白量,总核酸量,或者呼吸强度,间接测定总生物量,称为生理指标法;测定总蛋白:凯氏定氮法测定测总核酸:定磷法测定测呼吸强度:CO2产生量(速率)生理指标法22l生长规律:二分裂殖的单细胞微生物在分批培养过程中,其生物量的增长随培养时间的变化规律:即生长过程表现出延迟期、指数生长期(对数期)、稳定期、对数衰亡期(死亡期)的规律变化;l非二分裂殖或非单细胞的微生物在分批培养过程中,生长规律类似,但不典型;l一般通过绘制微生物培养过程的生
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