心血管疾病药效学研究全面版课件.ppt
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- 心血管疾病 药效 研究 全面 课件
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1、缺血性心脏病(心绞痛、心肌梗死)药一、实验设计的医学基础 根据缺血性心脏病(心绞痛、急性心肌梗死)的主要症状发现,中医将其归属于“厥心痛”、“真心痛”、“胸痹”范畴。病位以心肾为主。基本病机为本虚标实。本虚以脏气亏虚为主可兼阴虚;标实以血瘀痰阻多见,可兼气滞、寒凝。基本治法为宣痹通阳,活血化瘀,芳香温通及扶正固本。缺血性心脏病可由不同病因引起,最常见的原因是冠状动脉粥样硬化、冠状动脉血栓及冠状动脉痉挛。其共同特点是由于心肌供血不足所致氧的供需矛盾而发生的一系列病理生理改变及证候。改善心脏血管功能,增加心肌的供血供氧,降低氧的消耗,改善心肌代谢,缓解心绞痛,减小心肌梗死面积是药物治疗的主要目的。
2、二、药效学研究的实验设计 缺血性心脏病需要进行的药效学实验较多,般应以整体动物实验为基础,根据药物特点及实验要求适当选用器官、组织、细胞及分子水平的实验,多层次实验相结合,有利于重复验证和说明作用原理。但由于缺血性心肌发病机制复杂,防治的途径,方法及药物类型亦较复杂。应明确研究的思路,作用的途径,选择适宜的主要药效学实验方法及必要的观测指标,进行止确的分析判断,以求得科学的结论。(一)对心肌缺血心肌梗死的防治作用试验 1常用动物模型 (1)冠状动脉阻断或缩窄形成心肌缺血和心肌梗死模型:通过阻断或缩窄冠状动脉方法,如结扎、电刺激、气囊法,血管内异物法及注入凝血酶或ADP法等。(2)药物诱发心肌缺
3、血模型:通过药物诱发冠脉痉挛法,如垂体后叶素、麦角新碱,以及通过增加心肌耗氧法,如异丙肾亡腺素等。(3)离体实验心肌缺血模型:结扎离体心脏冠状动脉法、离体心脏低氧或无氧灌流法。(4)体外培养心肌细胞缺血样损伤模型:控制心肌细胞的供氧和培养基中的含糖量,形成“缺血样损伤”模型。(5)心肌缺血冉灌注损伤模型:整体动物心脏缺血再灌注损伤离体心脏和心肌细胞缺氧缺糖再灌注损伤等模型。以上心肌缺血模型第一项可用于急性和慢性心肌缺血实验,可观察药物的药理作用、起效及作用时间等。其余均为急性心肌缺血模型,可作药物作用机制分析研究。2观察指标 (1)直接测定心肌梗死范围:大体标本活体染色法,以定量组织学(NBI
4、染色或TIC染色或双重染色)观察心肌梗死面积的改变。病理切片显微镜检查,镜下观测心肌病变程度和范围。病理切片荧光照相法,利用四环素能与心肌坏死细胞中的钙整合的特性,在切片上进行荧光照相,以测定梗死面积。电子显微镜观察细胞膜、线粒体、内质网、细胞核及染色质等心肌细胞超微结构的改变。(2)间接测定心肌梗死范围:心外膜电图标测法,阻断或缩窄冠状动脉形成心肌缺血及心肌梗死,以多点心外膜电图标测心肌缺血的程度和范围的变化。酶学指标观测,测定血中磷酸肌酸激酶(CPK)、乳酸脱氢酶(LDH)等与心肌损伤相关的酶类变化,动态观察心肌损伤情况,定量分析心肌损伤程度。核示踪法,将肘心肌坏死有亲和力的物质进行核索标
5、记来观察梗死情况,常用的有锝四环素和锝焦磷酸亚锡。(3)缺血区测定指标:染料及荧光素法,通过从冠脉注入染料或荧光素,然后进行肌切片观察心脏血流灌注情况,从而计算无染料(或荧光)的面积(即缺血面积),如合并应用NBT做活体双重染色法可计算梗死面积与缺血面积的比值。核示踪法,利用放射核铊依靠钠泵进行转运而不能进入缺血或坏死细胞的特点,通过闪烁照相来观察心肌缺血部位及范围。放射自显影法观察缺血区。心表面荧光法,用表面荧光照相来分析缺血K情况。冠脉血流量、冠脉返流量及返流压的测定。心肌区域血流量的测定。(4)其他可供分析的指标:心肌代谢指标,如心肌氧代谢,其他物质及能量代谢,如FFA、ATP、PGI2
6、、TXA2、cAMP/cGMP,SOD、MDA、乳酸、钾、钙、镁离子、血凝状态及血液流变性等。3方法学评价 以上各项试验方法中,以阻断动物的冠状动脉所致之局限性心肌缺血是目前国内外应用最广泛的方法,通过狭窄或完全闭塞冠状动脉,使其供应区的血流减少或缺无,造成心肌缺血,心肌因缺血、缺氧而发生代谢紊乱,以致发生凝固性坏死,其发病过程和机制与临床相似,与中医理论“瘀血证”有一定联系,较为合理、实用。可根据所试药物功能、主治和作用特点选用上述形态、电生理、生化、放免、核示踪、荧光等观测指标与方法,可以定位、定性、定量的观测缺血心肌的动态变化及药物影响,较为准确的评价药效。应作为新药主要药效学的首选试验
7、。(二)对心脏血流动力学及心肌耗氧量影响试验 1实验动物与观测指标 (1)犬心功能及血流动力学实验:观察指标应包括心电图、心率。动脉血压、冠脉流量,冠脉阻力、心输出量、心肌收缩力、左室做功、左室内压、左室内压最大上升速率、心搏出量、心脏指数、心搏指数、总外周阻力等,并可同时测定心肌耗氧量、氧利用率、耗氧指数等。(2)猫、鼠等其他动物心功能及血流动力学试验:观察指标应包括心电图、心率,动脉血压、心输出量、左室内压、左室内压最大上升速率、中心静脉压、左室别血的张力指数、左室作功指数、心脏指数、左室舒张未期压等。(3)无创性心功能检查:如超声心动图、阻抗图、Y照相等。2方法学评价 心脏血流动力学、心
8、肌耗氧量等应作为评阶药物作用及作用机制的重要指标,对于了解药物对心肌功能、血管顺应性、心肌供血及心肌氧代谢的影响,结合对心肌缺血、心肌梗死等指标的影响,作综合性评价有重要意义。电极用浸泡生理盐水的烛芯棉线或细毛笔尖等柔软材料探查电极,联于心电图胸前导联描记,用普通心电图机或多导生理记录仪记录。注射后即刻、5s、10s、15s及30s、lmin、2min及5min,重复记录心电图(记录时间可据示波器所示异常情况决定)。2方法 取出生23曰乳鼠,开胸、取心室,放人盛有Eagle培养皿中,反复冲洗3次,三角烧瓶中用眼科剪将心室组织剪成碎块,加入006胰蛋白酶溶液。类为钙通道调节剂,阻断钙通道Ca内流
9、,使心肌细胞去极化减慢。手术者必须熟悉冠状动脉的分布和解削位置,便于定位。颈外静脉插入高敏感度压力换能器达右心房测中心静脉压(CVP),左股动脉测平均动脉压。当钙增加时,能降低蒲氏纤维的兴奋性,但却显著增加普通心肌的去极化,导致局部传导阻滞,并增加冲动扩散的不齐,而诱发心律失常。同时可测定血ATP、cAMPcGMP、无机离子、代谢物、能量代谢物质等,如需了解药物作用与前列腺素的关系,可观察PGl2或代谢产物的变化,以观察药物对的影响。左颈总动脉插入压力换能导管直至左心室测左室压峰值;、度房室传导阻滞。实验动物开胸完成后,分离冠状动脉左旋支,放置适宜电磁流量探头,测量冠脉血流量测定动脉血压。心脏
10、表面放置铂电极,连接电刺激,用于心脏起搏。心表面荧光法,用表面荧光照相来分析缺血K情况。左颈总动脉插入压力换能导管直至左心室测左室压峰值;(2)猫、鼠等其他动物心功能及血流动力学试验:观察指标应包括心电图、心率,动脉血压、心输出量、左室内压、左室内压最大上升速率、中心静脉压、左室别血的张力指数、左室作功指数、心脏指数、左室舒张未期压等。1 原理 氯化钙诱发心律失常的作用机制较复杂,心脏的不同部位对钙敏感性不同。(二)大鼠实验性心肌梗死模型 (三)其他试验 1血小板聚集性试验 血小板聚集性增强是造成血液循环障碍导致心肌缺血发生的重要原因之一。药物对动物血小板聚集性的影响可作为药效学研究的辅助指标
11、。实验动物用兔或大鼠。以三磷酸腺秆、花生四烯酸(AA)、胶原、凝血酶等作为绣导剂,应用比浊法或其他方法测定。2血栓形成及溶栓试验 冠状动脉血栓形成是直接导致心肌缺血因素之一。对血栓形成的影响和溶栓作用应为评价治疗心肌缺血药物药效的辅助指标。常用免或大鼠以Chmldlcr血栓形成法,测定心栓的重量及长度;应用大鼠以动静脉旁路法测定血栓湿重;电刺激人鼠颈总动脉形成动脉血栓,用以观察药物对体内血栓形成时间的影响;电刺激犬或猪的冠状动脉形成冠状动脉血栓,以心肌缺血程度范围、心肌梗死、心肌酶及冠脉血栓占管腔的百分比等多项指标综合观察药物对心肌缺血的防治作用和溶栓作用。3血液流变学试验 心肌缺血发生前后,
12、常伴有血液流变学改变。因此,测定血液黏度、血浆纤维蛋白原含量、血细胞比容、红细胞沉降、血小板黏附和聚集等血液流变学指标,对评价药物的作用有重要意义。4氧代谢试验 增加心肌的供氧和提高心肌的耐缺氧能力,改善心肌能量代谢是药物治疗缺血心脏病的重要作用。方法除前面介绍的心肌耗氧量测定外,可同时选用小鼠常压、低压耐缺氧等实验和指标。(四)阳性对照药 阳性对照药既可选择西药,也可选中药。西药作用明确,疗效肯定,尤其是一些经典药品,可检验实验方法可靠性。西药剂量与中药量相差较大,作用特点亦不大相同,不做药效强度比较。采用中药阳性药时,一股应选疗效肯定的功能主治相似的中成药对照,对照药应是药典记载或经卫生部
13、批准生产的;对照药剂应与受试药等效或相当,以便进行比较,同一受试药的不同药效学实验选用不同的阳性对照药。三、动物模型建立方法 (一)犬或小型猪心肌缺血及心肌梗死模型 1原理 通过缩窄或完全闭塞冠状动脉,减少或停止供应区的血流,形成心肌缺血、缺氧而发生代谢紊乱,以致发生心肌坏死。2方法 健康成年犬或小猪(现我国已培育出实验用“中国实验小型猪”),雌雄兼用,体重1015kg,经戊巴比妥钠(30mg/kg)静脉麻醉,手术台固定,分离气骨并插管,连接电动呼吸机,调节潮气量300600wi,动脉氧分压维持在1213kPa(90-100mmHg),血pH在正常范围;左侧第四肋间开胸,暴露心脏,剪开心包,做
14、心包床;分离冠状动脉左前降支中段(一般相当厂第三分支根部),可用以下儿种方法阻断冠状动脉,形成心肌缺血:(1)冠状动脉结扎法:在冠脉分离处穿34号处线以备结扎,或用动脉夹阻断,一般用于急性心肌缺血实验。(2)冠状动脉血栓形成法:将弧型针状电极(刺激电极)置于分离的冠状动脉下,另一电极(参考电极)距刺激电极o6mm处置于心外膜下,两电极分别连接电刺激仪的隔离器正负极,以25、lmA直流电刺激冠状动脉30min左右,冠状动脉内血栓形成,阻断冠状动脉血流,诱发心肌缺血。(3)冠状动脉气囊压迫法:压迫环由有机玻璃外套和可膨胀的乳胶小囊构成,外套长5mm侧面lmm的缝隙,血管由此进入肺内,小囊长34mm
15、,一端密闭,一端与塑料管相连,充满蒸馏水或生理盐水,经塑料管注水3040ul使小囊膨胀以压迫套内的血管,当压力去除时,小囊恢复原状,冠状动脉重新通畅,适用于急性和慢性心肌缺血或再灌实验。(4)Ameroid缩窄环法:为形成慢性冠状动脉闭塞、心肌缺血或观察冠状动脉侧支循环的变化,用具有吸水性的塑料环(Ameroid环)套在冠状动脉左旋支根部。关闭胸腔后,塑料环吸收组织水分膨胀,环外壳系硬质材料做成,限制环的外展,结果压迫冠状动脉,形成心肌缺血。环植人46星期,血骨内径缩小80-90。(5)清醒动物心肌缺血实验:将气囊压迫环固定在冠状动脉适当部位,缝合心包,放置心包膜电极,气囊的导管电极的导线分别
16、穿过胸壁引出皮外,逐层缝闭胸。实验时注入蒸馏水,使气囊膨胀,压迫冠状动脉造成心肌缺血,测量心外膜电图或其他观察指标,本法可反复阻断冠状动脉,进行多次清醒动物的心肌缺血实验及再灌注损伤实验。(6)缺血再灌注创伤:在心肌缺血一定时间造成心肌损伤后,冉供血一定时间,加重心肌损伤而形成再灌注损伤,观察药物的保护作用。3药物疗效判断 (1)心外膜电图标测:心外膜标测点的定位应包括缺血中心区、边缘区和非缺血区,标测方法:将心电极固定于具有一定弹性的无刺激性材料作成的片子上,该片四角缝于心外膜,如多点固定式心外膜电极。或直接将每个电极固定于心外膜表面,或用一个灯芯电极按顺序点测标测点。或用一个电极沿心表山一
17、定途径移,记出一个连续的心外膜电曲线。电极用浸泡生理盐水的烛芯棉线或细毛笔尖等柔软材料探查电极,联于心电图胸前导联描记,用普通心电图机或多导生理记录仪记录。确定心肌缺血以ST段抬高作为指标,以ST段抬高2mv的点数(NST)代表心肌缺血的范围,以各点段抬高的毫伏数之和(ST)代表心肌缺血的程度。记录阻断冠脉血流前后的变化及药物的影响。(2)缺血区及梗死区面积的测定:在阻断冠状动脉血流孔后,经左心耳根部向心房注人碳索墨水15mlkg,20-30s注完,迅速取下心脏,冰冻3040min,在冠状动脉结扎线下平行冠状沟等厚度将心室部分横切成5片,分别称重,再用求积仪或电脑图分析仪测量每片心肌两面的墨水
18、染色区与末染区(缺血区),计算心肌缺血范围的重量及百分比。然后将5片心肌置硝基四氮唑蓝(NBT)染液中,震摇染色15min后取出,正常心肌染为暗蓝色,梗死区心肌则小着色或浅黄色,用求积仪或落点求积法或电脑图像分析法测量每片心肌两面的梗死区和非梗死区,计算出每片心肌总面积、总重量;缺血区和梗死面积和重量;计算缺血区占心室百分比,梗死区占心空白分比,及梗死区占缺血区百分比,以评价药物的疗效。(3)生化指标:阻断冠状动脉前后定时抽取血液,测量血中乳酸脱氢酶的变化,分析心肌损伤情况。为避免具他肌肉组织释放的酶干扰,测同工酶。同时可测定血ATP、cAMPcGMP、无机离子、代谢物、能量代谢物质等,如需了
19、解药物作用与前列腺素的关系,可观察PGl2或代谢产物的变化,以观察药物对的影响。如需了解药物与氧自由基的关系,可测定超氧化物歧化酶(SOD)、丙二醛(MDA)作为氧自由基产生和清除的观测指标。(4)血液流变性指标测定:阻断冠状动脉前后定时抽取血液,测定全血黏度、血浆纤维蛋白原含量、血细胞比容、红细胞沉降率、血小板黏附和聚集性等血液流变学指标。4 注意点 犬和小型猪是建立心肌缺血模型最常用的动物,其体积大小适中,性情温顺、易训练、心脏解剖及生理特点与人相似,其影响因素有:(1)动物冠状动脉分支及侧支循环有个体差异,对分支及侧支变异大的,不合标准的应剔除不用,各组动物模型心肌缺血程度和范围接近。(
20、2)正式实验之前应熟练掌握动物开胸手术和冠状动脉分离手术,尽量减少出血,做心包床时,心肌不应移位而影响心脏的正常舒缩功能。(3)实验时应严格控制心外膜电极的位置、压力,心脏表面的温度、湿度及位置。心外膜电极放置的位置,或反复测定的位置应准确固定,不应移位。电极不可对心脏压力过大,心脏表面的温度及湿度应稳定,不可干燥。否则将影响实验的准确性。(4)实验可注射给药,但口服中药消化道给药,消化道灌胃给药或十二指肠给药,灌胃时,注意动物提前812h禁食。(5)在进行本项实验时一定要严格控制实验条件,排除干扰因素,确保实验结果。必要时同步测血氧、pH等。(二)大鼠实验性心肌梗死模型 I,原理 结扎大鼠的
21、冠状动脉前降支,阻断其分布区域的心肌供血,心肌细胞长时间缺血缺氧而造成不可逆损伤和坏死。2方法 取体重200250g雄性大鼠,乙醚吸入或戊巴比妥钠腹腔麻醉,仰卧固定,气管插管,在胸骨侧作2cm的纵切口,近胸骨侧剪断第三第四肋软骨,打开胸腔,联接呼吸机(通气量2mll00g,50次min)。剪开心包膜,暴露心脏,冠状动脉左前降根部穿线以备结扎,记录标准导联心电图,稳定10min,结扎冠状动脉左前降支,关闭胸腔,用针筒或橡皮吸引吸出动物喉部分泌物,使动物恢复呼吸。3 测定指标 (1)心电图ST段及Q波标测:记录标准导联心电图及胸前导联心电图,测ST、病理性Q波、严重心律失常等指标。(2)测定血浆生
22、化指标:如IDH、CPK、ATP、cAMPcGMP、PGI2TXA2等。(3)梗死面积估算:处死动物,取心脏横切数片,测梗死面积,方法同前,但误差较大。可用石蚶包坤组织块切片,染色,显微镜下观测,分级定度或用定量组织学方法直接算心肌梗死面积。4注意点 本实验方法在一般实验室条件均可进行,方法简便,但动物较小,操作不便,耐受缺氧时间不长,心脏较小,实验误差较大,可作为辅助试验。手术者必须熟悉冠状动脉的分布和解削位置,便于定位。操作者严格训练操作熟练,手术时间不宜过长,部分结扎冠状动脉后ECG无改变者需剔除。(三)心肌缺血再灌注损伤模型 1原理 心肌经一定时间缺血(缺氧)后,突然恢复血(氧)供,形
23、成更严重损伤,即“心肌缺血再灌注损伤”,其形成原因可能是心肌恢复血流时,加速细胞膜内外的钠钙交换,大量钙离子进人细胞内,形成“钙超载”:心肌细胞发生“拘缩”而丧失功能。心肌缺血再灌注损伤模型既可用于整体动物,又能用于离体心脏和体外培养心肌细胞。在药效学研究可根据所试药物的药理作用及作用特点,选用不同的动物和模型。2 方法 (1)在体心脏心肌缺血再灌注损伤模型:实验可用多种动物如,犬、小型猪、猫和大鼠等。一般采用阻断局部冠状动脉血流一定时间,然后恢复冠脉血流,形成再灌注损伤。手术方法观察指标大致同前。(2)离体心脏缺血再灌注损伤模型:实验一般用成年Wistar种雄性大鼠,猛击动物头部使昏迷,快速
24、开胸,摘取心脏、立即放人4改良Krebs-Hensleit液中,主动脉插管,装于Leaigendorff罐流装置,以KH液(pH74)恒温37进行灌流。将两电极分别于主动脉及左心室壁,记录心表面电图。实验程序:预备灌流期,心脏正常灌流(正常改良KH液),稳定l0min,给药灌流(含不同药物的改良K-H液,实验持续进行)5min。缺血期,以00号线于左心耳部下力进针,从肺动脉圆锥旁穿出,结扎冠状动脉10min。复灌期,剪断结扎线,进行再灌注15min。3 观察指标 心表面电图,记录复灌后5min出现的室性早搏PVC个数对数值lgPVC及室速与室颤总时对数值。心肌丙醛(ADA)含量及越氧化物歧化酶
25、(s0D)活性,实验结束后,剪下再灌区全层心肌约02g,制备匀浆进行测定。心肌离子含量测定,实验结束后,以无钙冲洗液(三羟甲基氨基甲烷缓冲掖)冲洗心肌,取再灌区层心肌约o 2g,干燥至恒重,以硝酸消化溶解,无离子水稀释至所需浓度,原子吸收分光光度汁或等离子休发射光谱仪测定钠,钾、钙,镁等离子含量。心肌梗死面积测定,实验结束时,将心脏横切染色,计算心肌梗死面积。(四)体外培养心肌细胞缺血样损伤模型 1原理 通常应用Wistar种大鼠乳鼠进行原代心肌细胞培养,用缺氧缺糖形成缺血样损伤。心肌细胞缺氧缺糖后,功能从形态有明显改变,如胞浆泡形成,胞浆颗粒增加出现异形心肌细胞等;经活体染色证实细胞死亡数增
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